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我现在正在做放射受体分析实验:提取大鼠脑膜蛋白后,用3H标记的放射性配体与之结合,测定放射性计数,做出受体饱和曲线,求KD和BMAX来测量受体功能。
有几个问题想问问大家:
1.我看到相当多文献中,结束反应用的是抽滤,由于条件的限制,我们这里没有该装置,所以就取了少数文献中的方法,用12000G离心10min结束反应,然后沉淀TRIS-HCL洗涤3次。测量时在沉淀所在的EP管中加入闪烁液(该闪烁液的配方适用于样品含水量较少的情况),每管1ML。请问大家,这样结束反应行吗?沉淀是否应该烘干?
2.我用的液闪仪计数不是很稳定,如果进行校正,尤其是读数比较小的时候(如只有数百),以减少误差?
3.加入闪烁液后,是否应该避光放置一段时间后再测量?
谢谢!
有几个问题想问问大家:
1.我看到相当多文献中,结束反应用的是抽滤,由于条件的限制,我们这里没有该装置,所以就取了少数文献中的方法,用12000G离心10min结束反应,然后沉淀TRIS-HCL洗涤3次。测量时在沉淀所在的EP管中加入闪烁液(该闪烁液的配方适用于样品含水量较少的情况),每管1ML。请问大家,这样结束反应行吗?沉淀是否应该烘干?
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3.加入闪烁液后,是否应该避光放置一段时间后再测量?
谢谢!
相关回复
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回复:时间:2008-04-18
这样做 不是很好 1 binding assay做起来不那么容易,实验中最关键的是放射性配体的浓度和 蛋白浓度的比例,他决定了你所得到的数据有无剂量依赖性,需要你做预实验,每次每个剂量要做三副管,之后取均值。2 30度反应一个小时后,最好还是负压抽滤,之后烘干滤纸,放闪烁液,再计数。3 你用离心的方法,我没有做过,但给我感觉误差要大,可重复性不是很高。但可以做几次预实验看看。4 加入闪烁液后可以直接计数,如果数据不稳定,可以放置一段时间再测,我试过,一般数据差距不会很大。 5 我做的是转染后的细胞提取蛋白,蛋白浓度20ug/反应体系,反应体系100ul,同位素10000dpm(相当于1nM)实验中要注意的事项,如果测得的数值偏高,而且没有梯度,通常都是蛋白浓度过高,同位素的浓度不够。
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