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- 实验原理
用LR进行转染时,首先需要优化转染条件,应找出该批LR对转染某一特定细胞适合的用量、作用时间等。先要固定一个DNA的量和DNA/LR混合物与细胞相互作用的时间,DNA可从1-5ug和孵育时间6h,开始,按这两个参数绘出相应LR需用量的曲线,再选用LR和DNA两者最佳的剂量,确定出转染时间(结果可参照表1所示)。
细胞种类:COS-7、BHK21、293E、SW480等均可作为受体细胞。脂质体本身会参与细胞生理活动,引起基因表达的上调或下调,因LR对细胞有一定的毒性,转染时间以不超过24h为宜。虽然人们早已发现脂质体对细胞有一定的影响,但由于一直没有更高效的转染方法来代替脂质体,所以脂质体转染试剂的选择非常重要。本人所用的转染剂为本人使用的是北京义翘神州的高效转染试剂Sinofection0.75ml,所用细胞为293Ecell。
- 实验步骤
2.转染液的制备:
(1)用无血清培养基于EP管中稀释0.2µgDNA至25μL,室温5分钟;
(2)往DNA稀释液中加入sinofection至50μL,混合均匀,室温放置15~20min。
3.将转染液加入DMEM+10%FBS,5%CO2,37℃孵化培养4-6小时;
4.基因表达是在48-72h后测试。
表1不同细胞系sinofection用法(96孔板)
| Celltype | Culturemedium | Cellsperwell | DNA | Sinofection | Mediumchangeafter4-6h |
| 293H | DMEM | 3×104 | 0.2µg | 0.5µL | DMEM+10%FBS |
| 293FT | DMEM | 3×104 | 0.2µg | 0.5µL | DMEM+10%FBS |
| 293E | DMEM | 3×104 | 0.2µg | 0.5µL | DMEM+10%FBS |
| 293F | DMEM | 3×104 | 0.2µg | 0.5µL | DMEM+10%FBS |
| COS7 | DMEM | 1.5×104 | 0.4µg | 0.5µL | DMEM+10%FBS |
| hela | DMEM | 2×104 | 0.3µg | 0.5µL | 1640+15%FBS |
| Caco2 | MEM | 3.5×104 | 0.3µg | 0.75µL | MEM+10%FBS |
| BHK21 | MEM | 2×104 | 0.2µg | 0.5µL | MEM+10%FBS |
| CHO-DG44 | DMEM+HT+pro | 2×104 | 0.5µg | 0.5µL | DMEM+HT+pro+10%FBS |
| RAW264.7 | DMEM | 3×104 | 0.2µg | 0.5µL | DMEM+10%FBS |
| MCF7 | MEM/NEAA+0.01mg/mL insulin+sodiumpyruvat | 2×104 | 0.1µg | 0.25µL | MEM/NEAA+0.01mg/mLinsulin+sodiumpyruvat+10%FBS |
| SW480 | IMDM | 3×104 | 0.4µg | 0.5µL | IMDM+10%FBS |
| MDCK | DMEM | 4×104 | 0.6µg | 1µL | DMEM+10%FBS |
| CHO-K1 | IMDM+Pro | 3×104 | 0.2µg | 0.5µL | IMDM+Pro+10%FBS |
| HepG2 | DMEM | 3×104 | 0.5µg | 0.75µL | DMEM+10%FBS |
| A549 | DMEM | 2×104 | 0.3µg | 0.5µL | DMEM+10%FBS |
| NIH/3T3 | DMEM | 1.5×104 | 0.1µg | 0.75µL | DMEM+10%FBS |
| vero | DMEM | 3×104 | 0.3µg | 0.75µL | DMEM+10%FBS |
| sf9 | SIMSF | 5×104 | 0.4µg | 0.75µL | SIMSF+10%FBS |
注意事项:注意保持DNA量和ifectDNA体积比例(1μgDNA:4μLifectDNA)
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