★技术手册

间充质干细胞成脂诱导分化完全培养基

★产品货号

BW12006

★产品描述

根据间充质干细胞成脂诱导分化的生长需要，培养基包含必需和非必需氨基酸、维生素、有机和无机化合物、激素、生长因子、微量矿物质以及其他补给成分。产品严格无菌，无病毒和支原体，性能稳定。

★产品内容

100ml间充质干细胞成脂诱导分化基础培养基

10ml胎牛血清（FBS）

10ml间充质干细胞成脂诱导分化培养基添加剂（ADM-GS）

产品说明书

★完全培养基配制

1.在配制完全培养基前，请把间充质干细胞成脂诱导分化培养基添加剂（ADM-GS）、青-链霉素(P/S)或庆大霉素放到2～8℃冰箱过夜解冻直到完全溶解后，添加到基础培养基中。

2.在使用完全培养基前，需要把培养基放到37℃恒温水浴中预热，注意温度不要超过37℃。

3.请把配制好的完全培养基放在2～8℃冰箱避光保存，并尽量在1个月内使用完。

★成骨诱导分化

1.观察MSC的生长状态，待细胞生长汇合度达到60~80%，吸去培养基，

2.加入PBS缓冲液，轻轻清洗单层细胞，再吸去PBS，

3.加入0.25%胰蛋白酶消化3~5min后，加入准备好的完全培养基终止消化，轻轻吹打悬浮细胞。

4.将MSC移入离心管中，1000rpm离心5min，去除培养基。

5.加入适量准备好的完全培养基悬浮细胞，血球计数板计数后，在培养器中按细胞密度5×103cells/cm2接种细胞，将培养器置于37℃，5%CO2的无菌培养箱中培养。每隔3~4天换一次培养基。

6.在经过特定时期的培养后，成脂培养后的细胞可以被油红O染色（诱导分化7~14天，见下面的方法）处理分析，以及可以进行基因表达分析和蛋白检测等。

★油红O染色分析

1.经过7天或者更长时间的成脂分化培养后，去除培养基，用PBS清洗一次，然后再用4%的甲醛溶液固定细胞30min，

2.用PBS清洗2次，加入现配和过滤后0.5%的油红O染色液，染色60min，用PBS清洗3次，去处残留的染色液，

3.在光学显微镜下进行显色观察分析。

★产品用于

仅供研究使用，不适用于人或动物体外诊断与治疗。

★贮藏条件及保存期限

间充质干细胞成脂诱导分化基础培养基2～8℃冰箱保存，有效期维持一年。间充质干细胞成脂诱导分化培养基添加剂（ADM-GS）-20℃冰箱避光保存，有效期维持两年。

★运输

冰袋运输。