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| 实验方法原理 | IL-1与小鼠胸腺细胞共同培养时,IL-1可刺激小鼠胸腺细胞增殖。进一步通过3H-TdR掺入法或染料摄入法判定小鼠胸腺细胞增殖量,推定IL-1的生物学活性。通过检测IL-1的生物学活性,可了解单核-巨噬细胞等的功能。 | ||||||
|---|---|---|---|---|---|---|---|
| 实验材料 | 小鼠胸腺细胞 试剂、试剂盒 | FCS-RPMI-1640培养液LPS刀豆蛋白A3H-TdR
实验步骤 | 1. 小鼠巨噬细胞产生IL-1的诱导 (1)常规收集小鼠腹腔巨噬细胞,10%FCS-IMDM培养液悬浮细胞2×106/ml,接种于24孔培养板,0.5ml/well。 (2)每孔加20ug/mlLPS0.15ml,37度,5%CO2孵育36~48小时。 (3)此时培养上清内含巨噬细胞分泌的高水平IL-1,收集培养上清,12000r/min离心15分钟,将上清移入新的1.5ml试管中,-20℃冻存。 2. IL-1的生物学活性测定 (1)胸腺细胞的制备:颈椎脱位处死小鼠,无菌取胸腺至于平皿中,加入5ml10%FCS-IMDM培养液,200目不锈钢网制成单个细胞悬液;1500r/min离心10分钟,再用5%Hank’s液洗涤细胞2次后,重悬于10%FCS-IMDM培养液中,调细胞浓度为1.0×107/ml。 (2)加样:取胸腺细胞加入96孔细胞培养板,0.1ml/well。再加入IL-1待测样品或IL-1标准品,50ul/well,实验孔再加入50ulConA(终浓度0.625ug/ml),同时设培养液对照孔(0.1ml细胞+0.1ml培养液)、ConA对照(0.1ml细胞+50ul培养液+50ulConA),均设3复孔。37度,5%CO2孵育36~60小时。 (3)3H掺入:每孔加1.85×1010 uBq/20ul(0.5uCi/20ul)3H-TdR,继续培养8小时。 (4)测定:多孔细胞收集器收集细胞于玻璃纤维滤纸上,用β液体闪烁仪测定3H-TdR (5)掺入量(cpm)以净cpm值(实验孔-ConA对照孔cpm值)为纵坐标,对应的不同稀释浓度IL-1标准品为横坐标,在半对数图纸上绘制出标准曲线,再从标准曲线上查出待测样品中的IL-1含量。 注意事项 | 1. 吸取LPS刺激的小鼠巨噬细胞培养上清时,必须离心,以除去细胞及细胞破碎成分。 2. ConA应选择淋巴细胞转化实验的亚剂量,即选择能够激活胸腺细胞,又不引起明显增殖的量,如果ConA过量,则不能有效反应IL-1的刺激活性。
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