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| 实验步骤 | 重组杆状病毒转导脊椎动物细胞材料杆状病毒(浓缩的高滴度的储备病毒) 细胞(如人肝细胞系;HepG2>,指数生长期细胞 Dulbecco磷酸盐缓冲液(PBS) 2.7mmol/LKCl I.5mmol/LKH2PO4 136.9mmol/LNaCl 8.9mmol/LNa2HPO4•7H20 丁酸纳(lmol/L,溶于PBS)(Sigma-Aldrich) 0.2pm滤器过滤除菌 膜蛋白酶-EDTA(Cambrex) 仪器 .细胞培养管 离心管(15ml) 移液管(IOml) 组织培养板(6孔板) 方法 这个方法是基于6孔板培养的细胞上设计的,如果使用的是与6孔板直径不同的多孔板或培养皿,需要相应地调整细胞的密度和试剂的体积。 收取处于指数生长期的细胞 1•除去细胞培养液,用5〜IOml无菌的PBS润洗细胞一次。 2•用胰蛋白酶——EDTA消化细胞,每90mm培养皿大约用lml。 3•将细胞悬液移到一个装有4ml新鲜培养液的15ml离心管子中,室温47〜92g离心5〜7min0 4•除去培养液,用1〜4ml新鲜培养液重悬细胞沉淀。 5.用血球计数板确定细胞密度,将细胞稀释到IXlO5〜2X105后接种于6孔板中。 6•每孔加人3ml培养液,将细胞置于加湿的培养箱中培养18〜20h,5%C02,37°C。 准确的细胞密度由细胞的大小和生长率决定,并且需要通过实验来确定。细胞在转导时达到50%〜7〇%的汇合度可以获得好的转导效率。 转导 7•用预热的含有病毒的无血清培养液替换原先的培养液,将细胞和病毒在加湿的培养箱中孵育2h,5%C02。温和的操作杆状病毒。.病毒不能经受剧烈涡旋或反复吹打。 8.吸去含有病毒的培养液,每孔中加人3ml预热的含血清的培养液。继续培养细胞。 9.转导后24〜72h,检查细胞 |
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