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1.固定:最好用4%的多聚甲醛固定液。对于冰冻切片,甲醛固定有时比冰冻丙酮好;但对于不同的组织和抗原,可选用不同的固定液。有时候商品化的抗体会有比较适合而推荐的固定液,请于购置前注意说明书。BouinS固定液:饱和苦味酸750ml,甲醛250ml,冰醋酸50ml,其对组织的穿透力较强,固定较好,结构完整,但因偏酸,对抗原有一定损害,且组织收缩明显,不适于组织标本的长期保存。PLP液:即高碘酸钠-赖氨酸-多聚甲醛,适于固定石蜡切片。适于富含糖类组织,对超微结构及许多抗原的抗原性保存较好。2.组织脱水,透明:时间不能太长,否则在切片时容易碎片,切不完整。3.切片时展片:有些组织在切片后难以在水中展开,这时可适当地在水中加入几滴乙醇。4.烤片:
DAB法显示过氧化物酶
〔原理〕过氧化物酶分解H2O2的过程中,下面反应不直接发生:AH2(供氢体)+H2O2→A(供氢体的氧化物)+2H2O2实验可知,有称为复合物Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、的酶——底物(受氢体)复合体生成,在复合体最后分解为酶和水时,游离的原子氧使供氢体氧化而显色。酶组织化学中所使用的供氢体应是含有色原性基团的发色物质,如奈酚和联苯胺。
免疫组化染色步骤(以ABC法为例)
溶液的配置:
2.柠檬酸盐缓冲液:
贮存液:
工作液:9mlA液+41mlB液+450ml蒸馏水→
4.20%甘油:80ml纯甘油+320ml蒸馏水
5.稀释抗体:1︰300,1︰400,1︰600(临用前配)
6.酒精的配置
染色步骤:一步法
1.载玻片烤箱中
2.二甲苯Ⅰ,
3.脱水,100%→95%→85%→75%酒精,每级均为3′。
4.蒸馏水冲洗,PBS5′﹡1
5.微波炉修复抗原:
6.PBS3′*3
8.PBS冲洗,PBS3′*3,甩干或纸巾吸去多余液体(勿碰到组织),PAPPen划境线。
9.blocksolution封闭抗原,室温10′。
10.倾出封闭液,不洗,滴加一抗(60ul),
11.PBS冲洗,3′*3。
12.除去PBS,滴加A增强剂,室温25′。
13.PBS冲洗,3′*3。
14.除去PBS,滴加B剂,室温35′。
15.PBS冲洗,3′*3。同时配置DAB显色剂。
16.除去PBS,DAB显色10′(在显微镜下观察染色程度控制染色时间)。蒸馏水冲洗。
17.复染:苏目素均匀滴加2滴,40′′,蒸馏水冲洗,
18.脱水:75%酒精→85%→95%→100%(3次),每级3′。
19.透明:二甲苯Ⅰ3′,二甲苯Ⅱ3′。
18.封片:中性树脂,加盖玻片(组织部位切勿残留小气泡),
结果:棕褐色反应产物代表抗原X的定位。
拍照
1.更换样品时,除了调整焦距和视野外,显微镜上的其他部件都不能动!所有的样品必须一次拍摄完全。特别是在拍摄过程中,不要一会用高倍镜,一会用低倍镜,来回切换物镜。
2.数码相机必须设置为手动曝光,并且保持每张照片用同样的曝光条件,同样的曝光时间,同样的光圈。特别要注意的是,一定要将数码相机的自动白平衡功能给关掉
3.免疫组化切片一般染色不太深,因此拍摄出的照片颜色较浅,就让它浅。拍摄出的照片中空白部位应尽可能呈现纯白色。测量其灰度应在250左右。如果呈现淡蓝色,一般是相机自动白平衡在起作用。另外一个因素是显微镜灯光电压不正确。要使灯光本身的色温正确。既不偏黄,也不偏蓝。
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